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Experimental Host Immune Response in Respiratory Chlamydiosis

S. MUHTADI, H. SAYED and J.C. WILT
Canadian Journal of Public Health / Revue Canadienne de Santé Publique
Vol. 67, No. 3 (MAY / JUNE 1976), pp. 227-231
Stable URL: http://www.jstor.org/stable/41987357
Page Count: 5
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Experimental Host Immune Response in Respiratory Chlamydiosis
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Abstract

The kinetics of antibody production in mice to DD34 strain of Chlamydia psittaci was investigated using different serological and immunobiological techniques. Mice of CF-I strain were either injected intraperitoneally or in the foot pads with inactivated Chlamydia, or were infected intratracheally with live organisms. The sera collected at appropriate intervals over the span of two months were analyzed by complement fixation (CF), hemagglutination inhibition (HI), passive hemagglutination (PHA), immunoelectrophoresis, passive cutaneous anaphylaxis (PCA), and by infectivity neutralization techniques. In addition, the presence of cellular immunity was assessed by the macrophage spreading inhibition (MSI) technique. Our data indicate that the CF and the PHA tests may be effectively used to assess antibody levels; the CF test shortly after immunization and the PHA test later. Although the hemagglutination inhibition test was found to be a sensitive technique for the detection of chlamydial antibodies in mice, the results suggest the superiority of the PHA test, particularly at later stages of immunization. Information from immunoelectrophoresis indicates the presence of complement-fixing antibodies in both the 7 S and 19 S protein fractions of immunoglobulins. Our data indicate that allergic antibodies, as measured by the PC A test and which contribute to skin reactions in chlamydial disease, are present as early as 6 days after infection of mice. Protective antibodies as measured by the infectivity neutralization test persist for at least one month after immunization of mice. The implications of these results for the diagnosis of human psittacosis infections are discussed. La cinétique de la production des anticorps chez les souris avec une souche DD34 de Chlamydia psittaci a fait l'objet dune étude au cours de laquelle on a utilisé diverses techniques sérologiques et immunologiques. On a fait des injections intrapéritonéales de Chlamydia inactivé ou des injections dans les bourrelets des pattes de souris appartenant au type CF-1 ou on les a infectées grâce à l'introduction dans la trachée d'organismes vivants. Les sérums recueillis à intervalles réguliers dans l'espace des deux mois ont été analysés au moyen des techniques suivantes: fixation de complément (FC), inhibition de l'hémoagglutination (IH), hémoagglutination passive (HAP), immunoélectrophorèse, anaphylaxie cutanée passive (ACP), neutralisation de l'infectiosité. On a en outre vérifié la présence de l'immunité cellulaire en utilisant la technique qui consiste à inhiber la propagation macrophage (IPM). Nos constatations montrent que l'on peut utilement employer les tests FC et HAP pour vérifier les niveaux des anticorps à condition d'utiliser le test FC tout de suite après l'immunisation tandis que le test HAP est utilisé plus tard. Sans doute a-t-onpu constater que le test d'inhibition de l'hémoagglutination était une technique d'une sensibilité suffisante pour détecter les anticorps provoqués par la présence de Chlamydia chez les souris mais les résultats semblent démontrer la supériorité du test HAP, surtout aux stades ultérieurs de l'immunisation. Les données recueillies grâce à l'immunoélectrophorèse indiquent la présence d'anticorps de fixation complémentaire dans les particules de protéine 7S et 19S des immunoglobulines. Nos résultats concluent également à la présence d'anticorps allergiques (mesurés par les test A CP) qui peuvent se manifester dès le sixième jour qui suit l'infection des souris et qui contribuent à l'apparition de réactions cutanées dans la maladie due à Chlamydia. Les anticorps protecteurs, mesurés à l'aide du test de neutralisation de l'infectiosité, persistent au moins un mois après l'immunisation des souris. On analyse les répercussions de ces résultats sur le diagnostic des infections accompagnant la psittacose chez l'homme.

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